De nos jours, l’antibiorésistance constitue l’un des défis majeurs de santé publique à l’échelle mondiale [1]. La perte d’efficacité des antibiotiques, liée à l’émergence et à la diffusion de souches bactériennes multirésistantes, menace les progrès accomplis dans les soins médicaux modernes et fragilise la prise en charge des maladies infectieuses.

L’augmentation de ces phénotypes s’accompagne d’une hausse de la morbidité, de la mortalité et des coûts de santé, tout en compromettant la sécurité des patients hospitalisés [1].

Les bactéries multirésistantes (BMR) correspondent à des souches ayant acquis des mécanismes de résistance à plusieurs familles d’antibiotiques, réduisant considérablement les options thérapeutiques disponibles. Selon les définitions internationales, une bactérie est qualifiée de multirésistante lorsqu’elle présente une résistance à au moins trois classes d’antibiotiques, avec possibilité d’évolution vers des phénotypes à résistance très étendue ou panrésistante [2].

À l’échelle internationale, la progression des BMR est favorisée par l’usage massif et parfois inapproprié des antibiotiques, la sélection de souches en contexte d’hospitalisation prolongée et les capacités de dissémination de certains déterminants génétiques de résistance [3]. Les unités de réanimation sont particulièrement concernées en raison de la sévérité des patients, de la fréquence des infections associées aux soins, du recours aux dispositifs invasifs et de l’utilisation intensive d’antibiotiques à large spectre. Dans ces secteurs à haut risque, la surveillance microbiologique et les programmes de bon usage des antibiotiques constituent des outils essentiels pour maîtriser l’écologie bactérienne et limiter la diffusion des résistances [4].

Dans ce contexte, l’analyse des tendances locales d’antibiorésistance revêt une importance stratégique pour orienter la politique d’antibiothérapie, adapter les mesures de prévention et renforcer les stratégies de contrôle des infections en milieu hospitalier.

Matériels et Méthodes :

Cette étude a été menée au laboratoire de microbiologie du CHU Hassan II de Fès. Il s’agit d’une étude rétrospective, descriptive et observationnelle réalisée sur une période de deux ans, du 1er janvier 2023 au 31 décembre 2024. L’objectif était de décrire le profil microbiologique des infections à bactéries multirésistantes (BMR) isolées chez des patients hospitalisés en réanimation.

Pour chaque prélèvement positif à bactéries multirésistantes (BMR), les caractéristiques démographiques, les données cliniques, les résultats biologiques, les informations thérapeutiques ainsi que l’évolution des patients ont été extraites à partir des dossiers médicaux, des registres de bactériologie et du dossier médical informatisé (Hosix), garantissant l’exhaustivité et la fiabilité des isolats inclus. Nous avons inclus l’ensemble des prélèvements positifs issus de patients du service de réanimation, comprenant les prélèvements respiratoires (PDP, crachats et liquides bronchoalvéolaires, hémocultures, urines, prélèvements de pus et cathéters). Les prélèvements réalisés dans le cadre du dépistage de portage nasal ou digestif ont été exclus.

L’étude a ciblé quatre catégories de BMR : Entérobactéries productrices de bêta-lactamases à spectre étendu (E-BLSE) ou carbapénèmes (EPC), Acinetobacter baumannii résistant à l’imipénème (ABRI), Pseudomonas aeruginosa résistant à la ceftazidime et/ou à l’imipénème (PAMR) et Staphylococcus aureus résistant à la méticilline (SARM).

Au laboratoire, les échantillons ont été traités selon des procédures standardisées. Les échantillons urinaires ont été ensemencés à l’aide d’une anse calibrée de 10 μL en dénombrement, tandis que les prélèvements respiratoires ont été fluidifiés, dilués et ensemencés en étoile. Les autres prélèvements ont été traités selon la technique des cadrans. Le choix des milieux dépendait du type de prélèvement et incluait des géloses ordinaires, sélectives ou enrichies. L’identification bactérienne reposait sur l’étude des caractères morphologiques, culturaux et biochimiques, complétée par une identification automatisée via le système Phoenix 100 (Becton Dickinson). Les hémocultures ont été incubées dans le système BD Bactec® jusqu’à détection, puis ensemencées sur géloses au sang.

La sensibilité aux antibiotiques a été déterminée par antibiogramme automatisé en milieu liquide et par diffusion en milieu gélosé Mueller-Hinton. L’interprétation des profils de sensibilité a été réalisée selon les recommandations du Comité de l’antibiogramme de la Société Française de Microbiologie (CA-SFM/EUCAST 2023-2024). Les bactéries à croissance lente ont été testées sur MH-F enrichi en sang de cheval et NAD.

Dans une seconde étape, les tests de sensibilité ont été complétés par des investigations approfondies visant à explorer les mécanismes de résistance. Pour certaines souches suspectes de résistance aux carbapénèmes, des tests rapides immunochromatographiques ont été réalisés afin de détecter la présence de carbapénémases, notamment les principaux types rencontrés au sein des entérobactéries et des bacilles non fermentant tels que KPC, NDM, VIM et OXA-48. Dans certains cas, une identification moléculaire des gènes de résistance a également été effectuée pour confirmer les résultats phénotypiques ou préciser le mécanisme de résistance impliqué. Les données obtenues ont fait l’objet d’analyses statistiques afin d’identifier les tendances et les corrélations éventuelles entre les profils de résistance et les caractéristiques cliniques des patients. Cette approche méthodologique vise à mieux comprendre les mécanismes impliqués dans les infections à BMR en réanimation et à contribuer à l’élaboration de stratégies de prévention et de prise en charge plus ciblées.

Resultats :

Au CHU Hassan II de Fès, les infections documentées en réanimation (n=2539) étaient dominées par les pneumopathies (n=943), suivies par les infections urinaires (n=792) et les bactériémies (n=361). Les infections suppurées (n=202), les infections liées aux cathéters (n=106), les infections des liquides de ponction (n=97) et les méningites (n=38) étaient moins représentées. La proportion de bactéries multirésistantes (BMR) variait selon la localisation infectieuse, atteignant 57 % pour les pneumopathies, 51 % pour les infections urinaires et 33 % pour les bactériémies et 30 % les infections des liquides de ponction. Des taux plus faibles étaient observés dans les infections suppurées (25 %), les infections liées au cathéters (17 %) et les méningites (8 %). La distribution globale des BMR retrouvées en réanimation était dominée par les entérobactéries (52 %), suivies par Acinetobacter baumannii (32 %), Pseudomonas aeruginosa (10 %) et le Staphylococcus aureus résistant à la méticilline (SARM) (6 %).

L’analyse de la répartition des BMR selon le site infectieux à Fès montre une distribution distincte selon le foyer d’infection. Les infections urinaires étaient largement dominées par les entérobactéries, représentant 94 % des BMR isolées. En revanche, les pneumopathies nosocomiales et les infections liées aux cathéters étaient majoritairement associées à Acinetobacter baumannii multirésistant, avec des proportions respectives de 78 % et 75,8 %, tandis que les entérobactéries y représentaient 21,8 % et 24 %. Ces résultats mettent en évidence une variation de l’écologie bactérienne multirésistante selon le site infectieux en réanimation.

Les entérobactéries multirésistantes présentaient des profils de résistance élevés face à plusieurs familles d’antibiotiques avec un taux de résistance de 81 % à l’amoxicilline (AMX) et de 62 % à l’amoxicilline–acide clavulanique (AMC). La résistance aux céphalosporines de troisième génération (ceftriaxone, CRO) était de 21 %, tandis qu’elle atteignait 20 % pour le céfépime (FEP). Les taux de résistance observés étaient de 24 % pour la ciprofloxacine (CIP), 38 % pour le cotrimoxazole (SXT) et 19 % pour la gentamicine (GN). En revanche, des taux plus faibles étaient enregistrés pour l’imipenème (6 %) et l’amikacine (6 %) .

La répartition des entérobactéries productrices de BLSE, représentant environ un tiers des résistances aux céphalosporines de troisième génération, variait selon le site infectieux. Les infections urinaires constituaient le principal foyer (51 %), suivies des pneumopathies (20 %), des bactériémies (13 %), des infections suppurées (12 %) et des infections liées aux cathéters vasculaires (4 %).

Les entérobactéries productrices de carbapénèmes (EPC) représentaient 23 % des entérobactéries résistantes aux C3G (n=113). Les mécanismes de résistance identifiés étaient dominés par les phénotypes NDM (40 %) et OXA-48 (20 %), ainsi que par les co-productions OXA-48 + NDM (39 %). Une évolution temporelle notable était observée avec une augmentation des souches NDM entre 2023 (37 %) et 2024 (49 %). Les EPC étaient principalement impliqués dans les pneumopathies (36 %), les infections urinaires (33 %), les bactériémies (11 %) et les infections suppurées (13 %). Ce profil souligne une contribution majeure des entérobactéries dans les infections respiratoires et urinaires en réanimation.

Les isolats d’Acinetobacter baumannii multirésistant (n=252) provenaient majoritairement de pneumopathies (56 %), d’infections suppurées (16 %), d’infections liées au catheter (16 %) de bactériémies (7 %) et d’infections urinaires (4%). Les souches présentaient des taux de résistance très élevés vis-à-vis des bêta-lactamines (céftazidime et céfépime : 100 % ; pipéracilline-tazobactam : 98 %), des carbapénèmes (imipénème et méropénème : 98 %), des fluoroquinolones (ciprofloxacine : 98 %) et des aminosides (amikacine : 95 % ; gentamicine : 98 %). La colistine demeure la molécule la plus active in vitro, avec seulement 1 % de résistance.

Concernant Pseudomonas aeruginosa, les principales localisations infectieuses étaient les infections suppurées (52 %) et les pneumopathies (19 %), suivies des infections urinaires (12 %), le profil de résistance de Pseudomonas aeruginosa montrait des taux variables selon les antibiotiques testés. La résistance était de 28 % à la ceftazidime (CAZ), 16 % au céfépime (FEP) et 7 % au piperacilline–tazobactam (PTZ). Concernant les carbapénèmes, les taux de résistance étaient de 14 % pour l’imipénème (IMP) et de 12 % pour le méropénème (MERO). La résistance à la ciprofloxacine (CIP) atteignait 29 %, tandis qu’elle était de 13 % pour la gentamicine (GN) et de 32 % pour l’amikacine (AK).

Enfin, le Staphylococcus aureus était principalement isolé à partir des infections suppurées (35 %), des bactériémies (20 %) et des pneumopathies (15 %). Le taux de SARM atteignait 6 %, tandis que les glycopeptides (vancomycine, teicoplanine), la linezolide et la gentamicine conservaient une activité in vitro complète ou élevée.

Répartition des BMR et des souches sensibles selon le site infectieux